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实验动物的取血方法 2007-11-10 11:01 采血方法
（1）小鼠和大鼠
①尾尖取血
将动物装在固定筒内，露出尾巴。将尾共剪掉1～2mm(小鼠)或5cm(大鼠)，然后自尾根向尖端按摩，血自尾尖流出。亦可先将鼠尾泡于500C热水中，揩干后剪去尾尖，取血后用棉球压迫止血。此法可反复多次取血，小每次可取血0.1ml，大鼠0.3～0.5ml。
②眶动脉和眶静脉取血
将动物头部按住并压迫眼球使突出充血后，以止血钳迅速钳取眼球后。眼眶内很快流出血液，将血滴入玻璃器皿内，达到所需采用量后用棉球压迫眼眶止血。此法所取血量较多，小鼠每次可采血0.2～0.3ml，大鼠每次可采血0.5～lml，动物可存活。间隔数日后可自另一侧眼眶取血。
③眼眶后静脉丛取血
用一长约7～lOcm的玻璃毛细管(内径约1mm)，另端渐扩大呈喇叭形，将其尖端折断。折断端锋利，预先将玻璃管浸入l％肝素溶液，取出干燥。取血时左手抓住鼠两耳间头部皮肤，使头固定，并轻轻向下压迫颈部两侧，使眼球充分外突，眼眶后静脉丛充血。右手持毛细管，将其尖端插入眼睑与眼球之间并向眼底方向移动，稍加吸引，血液即流入玻璃管中。取血完毕拔出毛细管，左手放松出血即停止。毛细管就叫“玻璃毛细管”，是硬质中性玻璃，内径：0.9--1.1mm, 壁厚0.1--0.15mm 管长120mm。
④股静脉(或股动脉)取血
麻醉动物背位固定，切开左或右腹股沟的皮肤，作股静脉或股动脉分离手术。注射针穿刺股动脉或股静脉抽血，也可在颈静脉或颈动脉处穿刺取血。此法小鼠可采血0.2～0.8ml，大鼠约0.4～0.6ml。
⑤断头取血
用剪刀剪掉鼠头，立即将鼠头向下，提起动物，将血滴入容器内。小鼠可采用0．8～1.2ml，大鼠5～lOml。
（2）豚鼠
①心脏取血
豚鼠背位固定，左手触摸心脏搏动最明显处。一般在胸骨左缘第4～6肋间隙，用注射针刺入心脏。血液即进入注射器内，取血宜迅速，以防血液凝固。本法取血量多，可达15～20ml。
②背中足动脉取血
助手固定动物，将其右或左后肢膝关节伸直提到术者面前。术者将动物脚背面用酒精消毒，找出背中足静脉后以左手的拇指和食指拉住豚鼠的趾端，右手持注射针刺入静脉。采血后，迅速压迫止血。
PS:眼眶取血要点之一是固定好大鼠，不可让动物挣扎。最好向有经验的老师请教，多练习几次应该可以完成的。 下面是大鼠后眼眶静脉丛连续穿刺
穿刺部位是在眼球和眼眶后界之间的后眼眶静脉丛。采用特制的硬玻璃吸管，管长15厘米，前端拉成毛细管。取血时，用手从背部捉住动物，同时用食指和拇指握住颈部，利用对颈部所加的轻压力，使头部静脉淤血，将消毒的吸管用抗凝剂湿润其内壁，从内侧眼角将吸管转向前，并轻压刺入，深约4 -5mm就达到后眼眶静脉丛，血液自然进入吸管内。在得到所需血量后，除去加于颈部的压力，同时抽出吸管。
把肝素的量调成了10mg/ml,是原来的20倍。
大、小鼠采血，在需血量较少时常用割尾采血方法。多用45℃温水浴或电热烤数分钟或用95%酒精涂擦，使鼠尾血管充盈后进行；小鼠割去尾尖1～2mm，大鼠割去尾尖3～5mm，让血液自由顺管壁流入试管即可。采血量较多时，大、小鼠与家兔均可采用眼眶后静脉丛取血和股动、静脉取血的方法。对大、小鼠进行眼眶后静脉丛取血时，用左手抓住鼠两耳之间的头部皮肤，使头部固定，并轻轻向下压迫颈部两侧，引起头部静脉血液回流困难，使眼球充分外突，眶后静脉丛充血。右手持玻璃毛细管与鼠面成45°夹角刺入下眼睑与眼球之间，轻轻向眼底部方向移动，一般刺入深度小鼠约2～3mm，大鼠约4～5mm，当感到有阻力时即停止推进，同时退出约0.1～0.5mm，在此处旋转取血管以切开静脉丛，可边退边抽取血液。
小鼠心脏取血，具体方法是：用解剖刀将小鼠的腹部皮肤剪开，然后将注射器插入心脏的部位，一般每只小鼠可抽0.7ml.断头法：剪断鼠头直接取血，取血量较大 摘眼法：用弯头镊，一只可取0.5ml 要是你不想要mouse的命，就取尾静脉，一只大概只能取0.1ml。在尾静脉远端剪断，轻轻按压，注意必须轻点儿，不然取出的血容易溶血，要不也可用小枪尖去吸。
这是些比较简单的方法，我们最常用摘眼和尾静脉。
有人做过80只小鼠，眼眶取血一只没死，一次取0.5ml，没问题，只要不超过0.8毫升。
1.割(剪)尾采血 当所需血量很少时采用本法。每鼠一般可采血10余次以上。小鼠每次可取血0.1ml，大鼠0.3～0.5ml。
2.鼠尾刺血法 大鼠用血量不多时(仅做白细胞计数或血红蛋白检查)，可采用本法。先将鼠尾用温水擦拭，再用酒精消毒和擦拭，使鼠尾充血。用7号或8号注射针头，刺入鼠尾静脉，拔出针头时即有血滴出，一次可采集10～50mm3。如果长期反复取血，应先靠近鼠尾末端穿刺，以后再逐渐向近心端穿刺。
3.眼眶静脉丛采血 体重20-25g的小鼠每次可采血 0.2-0.3ml；体重200-300g大鼠每次可采血0.5-1.0ml，可适用于某些生物化学项目的检验。
4.断头取血 采血者的左手拇指和食指以背部较紧地握住大(小)鼠的颈部皮肤，并作动物头朝下倾的姿势。右手用剪刀猛剪鼠颈，约1/2-4/5的颈部前剪断，让血自由滴入盛器。小鼠可采用约0.8～1.2ml;大鼠约5-10ml。
5.心脏采血 鼠类的心脏较小，且心率较快，心脏采血比较困难，故少用。若做开胸一次死亡采血，先将动物作深麻醉，打开胸腔，暴露心脏，用针头刺入右心室，吸取血液。小鼠约0.5-0.6ml；大鼠约0.8-1.2ml。
6.颈动静脉采血 先将动物仰位固定，切开颈部皮肤，分离皮下结缔组织，使颈静脉充分暴露，可用注射器吸出血液。在气管两侧分离出颈动脉，离心端结扎，向心端剪口将血滴入试管内。
7.腹主动脉采血 最好先将动物麻醉，仰卧固定在手术架上，从腹正中线皮肤切开腹腔，使腹主动脉清楚暴露。用注射器吸出血液，防止溶血。或用无齿镊子剥离结缔组织，夹住动脉近心端，用尖头手术剪刀，剪断动脉，使血液喷入盛器。 8.股动(静)脉采血 先由助手握住动物，采血者左手拉直动物下肢，使静脉充盈。或者以搏动为指标，右手用注射器刺入血管。体重15-20g 小鼠采血约0.2-0.8ml，大鼠约0.4-0.6ml。
其实大鼠心脏采血不象说的那么复杂 1.浅麻醉大鼠（随时添加！） 2.四肢展开固定在平板上 3.按常规碘酒、酒精消毒后 4.用食指感觉心博最动处
5.大约在胸骨下缘1/3处、稍偏左0.2-0.5左右的地方垂直进针（1/4号） 6.针头抵心脏有明显的搏动感，再稍进针，有空虚感，血液跳跃而上针腔 7.从血液的颜色很容易判断在心室还是心房，一般都在心室 8.多次同一大鼠的心脏采血，切记初次进针的位置及深度，不要随意更换固定姿势！ 9.我每次取1ml血液，大约可操作4-5次（200g大鼠）
告诉你一个办法,把塑料导管拉成毛细管,内壁用抗凝药浸湿,准备一管生物胶,颈静脉插管维持插管状态,管另一头接注射器,取血的时候用,不取的时候用细棍类的东西堵上,用生物胶把皮肤粘上,用大鼠固定装置固定大鼠,大鼠可以不吃不喝也能取48~72小时血.这是国外作药代用的取血方法喔.
小鼠和大鼠
剪尾取血法：将清醒鼠装入深颜色的布袋中，将鼠身裹紧，露出尾巴，用酒精涂擦或用温水浸泡使血管扩张，剪断尾尖后，尾静脉血即可流出，用手轻轻地从尾根部向尾尖挤捏，可取到一定量的血液。取血后，用棉球压迫止血。也可采用交替切割尾静脉方法取血。用一锋利刀片在尾尖部切破一段尾静脉，静脉血即可流出，每次可取0.3～0.5 ml，供一般血常规实验。三根尾静脉可替换切割，由尾尖向根部切割。由于鼠血易凝，需要全血时，应事先将抗凝剂置于采血管中，如用血细胞混悬液，则立即与生理盐水混合。
眼球后静脉丛取血法：左手持鼠，拇指与中指抓住颈部皮肤，食指按压头部向下，阻滞静脉回流，使眼球后静脉丛充血，眼球外突。右手持1％肝素溶液浸泡过的自制吸血器，从内呲部刺入，沿内下眼眶壁，向眼球后推进4～5 mm，旋转吸血针头，切开静脉丛，血液自动进入吸血针筒，轻轻抽吸血管(防止负压压迫静脉丛使抽血更困难)，拔出吸血针，放松手压力，出血可自然停止。也可用特制的玻璃取血管(管长7～10 cm，前端拉成毛细管，内径0.1～1.5 mm，长为1 cm，后端管径为0.6 cm)。必要时可在同一穿刺孔重复取血。此法也适用豚鼠和家兔。
眼眶取血法：左手持鼠，拇指与食指捏紧头颈部皮肤，使鼠眼球突出，右手持弯镊或止血钳，钳夹一侧眼球部，将眼球摘出，鼠倒置，头部向下，此时眼眶很快流血，将血滴入预先加有抗凝剂的玻璃管内，直至流血停止。此法由于取血过程中动物未死，心脏不断跳动，一般可取鼠体重4％～5％的血液量，是一种较好的取血方法，但只适用一次性取血。
心脏取血：动物仰卧固定于鼠板上，用剪刀将心前区毛剪去，用碘酒、酒精消毒此处皮肤，在左侧第3～4肋间用左手食指摸到心搏，右手持连有4～5号针头的注射器，选择心搏最强处穿刺，当针头正确刺入心脏时，鼠血由于心脏跳动的力量，血自然进入注射器。
断头取血：实验者带上棉手套，用左手抓紧鼠颈部位，右手持剪刀，从鼠颈部剪掉鼠头迅速将鼠颈端向下，对准备有抗凝剂的试管，收集从颈部流出的血液，小鼠可取血0.8～1.2 ml，大鼠可取血5～10 ml。
颈动静脉、股动静脉取血：麻醉动物背位固定，一侧颈部或腹股沟部去毛，切开皮肤，分离出静脉或动脉，注射针沿动静脉走向刺入血管。20 g小鼠可抽血0.6 ml，300 g大鼠可抽血8 ml。也可把颈静脉或颈动脉用镊子挑起剪断，用试管取血或注射器抽血，股静脉连续多次取血时，穿刺部位应尽量靠近股静脉远心端。
豚鼠
心脏取血：需二人协作进行，助手以两手将豚鼠固定，腹部面向上，术者用左手在胸骨左侧触摸到心脏搏动处，一般在第4～6肋间、选择心跳最明显部位进针穿刺。针头进入心脏，则血液随心跳而进入注射器内，取血应快速，以防在试管内凝血。如认为针头已刺入心脏，但还未出血时，可将针头慢慢退出一点即可。失败时应拔出重新操作，切忌针头在胸腔内左右摆动，以防损伤心脏和肺脏而致动物死亡。此法取血量大，可反复采血。
背中足静脉取血；助手固定动物，将其右或左后肢膝关节伸直提到术者面前，术者将动物脚背用酒精消毒，找出背中足静脉，以左手的拇指和食指拉住豚鼠的趾端，右手拿注射针刺入静脉，拔针后立即出血，呈半球状隆起，用纱布或棉花压迫止血。可反复取血，两后肢交替使用。
家兔
心脏取血：将动物仰卧在兔板上，剪去心前区毛，用碘酒、酒精消毒皮肤。用左手触摸胸骨左缘第3～4肋间隙，选择心脏跳动最明显处作穿刺点，右手持注射器，将针头插入胸腔，通过针头感到心脏跳动时，再将针头刺进心脏，然后抽出血液。
耳缘静脉取血：选好耳缘静脉，拔去被毛，用二甲苯或75％酒精涂擦局部，小血管夹子夹紧耳根部，使血管充血扩张．术者持粗针头从耳尖部的血管逆回流方向入静脉取血，或用刀片切开静脉，血液自动流出，取血后用棉球压迫止血，一般取血量为2～3 ml，压住侧支静脉，血液更容易流出，取血前耳缘部涂擦液体石蜡，可防止血液凝固。
耳中央动脉取血：免置入固定箱内，用手揉擦耳部，使中央动脉扩张。左手固定兔耳，右手持注射器，中央动脉末端进针，与动脉平行，向心方向刺入动脉。一次取血量为15 ml，取血后棉球压迫止血。注意兔中央动脉易发生痉挛性收缩。抽血前要充分使血管扩张，在痉挛前尽快抽血，抽血时间不宜过长。中央动脉末端抽血比较容易，耳根部组织较厚，抽血难以成功。
股静脉取血：行股静脉分离手术，注射器平行于血管，从股静脉下端向向心端方向刺入，徐徐抽动针栓即可取血。抽血完毕后，要注意止血。股静脉易止血，用干纱布轻压取血部位即可。若连续多次取血，取血部位应尽量选择离心端。
颈静脉取血：将兔固定于兔箱中，倒置使兔头朝下，在颈部上l/3的静脉部位剪去被毛，用碘酒、酒精消毒，剪开一个小口，暴露颈静脉，注射器向向心端刺入血管，即可取血。此处血管较粗，很容易取血，取血量也较多，一次可取10 ml以上，用干纱布或棉球压迫取血部位止血。
猫 从前肢皮下头静脉、后肢股静脉、耳缘静脉取血，需大量血液时可从颈静脉取血。
犬
心脏取血：犬心脏取血方法与兔相似。将犬麻醉固定于手术台上，暴露胸部，剪去左侧3～5肋间被毛，碘酒、酒精消毒局部，术者触摸心搏最明显处，避开肋骨进针，一般在胸骨左缘外1 cm第4肋间处可触到，用6～7号针头注射器取血，要垂直向背部方向进针。当针头接触到心脏时，即有搏动感觉。针头进入心腔即有血液进入注射器。一次可采血20 ml左右。
小隐静脉和头静脉取血：小隐静脉从后肢外踝后方走向外上侧，头静脉位于前肢脚爪上方背侧正前位。剪去局部被毛，助手握紧腿，使皮下静脉充盈，术者按常规穿刺即可抽出血。
颈静脉取血：犬以侧卧位固定于犬台上，剪去颈部被毛，常规消毒。助手拉直颈部，头尽量仰。术者左手拇指压住颈静脉入胸腔处，使颈静脉曲张。右手持注射器，针头与血管平行，从远心端向向心端刺入血管，颈静脉在皮下易滑动，穿刺时要拉紧皮肤，固定好血管，取血后棉球压迫止血。
股动脉取血：麻醉犬或清醒犬背位固定于犬台上，助手将犬后肢向外拉直，暴露腹股沟，剪去被毛，常规消毒，并用左手食指、中指触摸动脉搏动部位，并固定好血管，右手持注射器，针头与皮肤呈45°角，由动脉搏动最明显处直接刺入血管，抽取所需血液量，取血后，需较长时间压迫止血。
类别：生命科学 |
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