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实验二 植物核酸的提取教案

发布时间:2020-03-02 09:41:41 来源:范文大全 收藏本文 下载本文 手机版

授课教师 学生人数 55 课 题 实验二 植物基因组DNA的提取 授课类型 新授课 授课方法 讲授、演示 教学目的 掌握CTAB法提取植物基因组DNA的原理与方法 教学重点 理解每一步实验操作的目的 教学难点 实验操作过程中的一些注意事项 教学过程

一、背景知识

1.DNA在细胞中存在的位臵?植物细胞DNA存在的位臵和动物细胞有何不同?(图) 教学用具 多媒体

2.DNA的存在形式

双螺旋结构图

双螺旋结构组成

染色体是怎样形成的?

一级结构(核小体=双螺旋+组蛋白)-二级结构(螺线管)-三级结构(超螺线管)-四级结构(染色体)

真核生物基因组DNA是经过四级包装形成了染色体,先是DNA形成双螺旋结构,再与组蛋白形成核小体(一级结构),压缩7倍,再形成螺旋管(二级结构),压缩6倍,之后再形成超螺旋管(三级结构),压缩40倍,最后超螺旋管压缩形成染色体(四级结构),再压缩5倍,正常细胞中基因组DNA是以染色质(相当于一级结构)形式存在,在细胞分裂的中期以染色体形式存在,真核生物细胞质DNA主要是以裸露的环状DNA形式存在,没有核小体结构。

3.遗传物质核酸除了DNA外还有另外一种,即RNA,它与DNA在结构上的区别?(图)

RNA基本单位中间的五碳糖是核糖,含氮碱基尿嘧啶(U)替代 胸腺嘧啶(T) 4.核酸的理化性质

(1)形状:DNA为白色类似石棉样的纤维状物, RNA的纯品呈白色粉末或结晶。

(2)溶解性:一般都溶于水,不溶于乙醇、异丙醇、氯仿等有机溶剂,它们的钠盐比游离酸易溶于水。 (3)保存:在酸性溶液中,核酸易水解,中性或弱碱性溶液中较稳定。

二、实验目的

1.掌握CTAB法提取植物基因组DNA的原理 2.CTAB法提取植物基因组DNA的实验方法

三、实验原理

1.核酸在细胞中的存在方式,

是以核酸-蛋白质复合物的形式存在,如一级结构核小体(图):DNA螺旋+组蛋白

2.通过低温研钵破坏植物细胞壁

3.加入CTAB溶解细胞膜,CTAB与核酸形成核酸-CTAB复合物,使核酸与蛋白质分离。

4.加入高盐溶液溶解核酸-CTAB复合物,加入蛋白质变性剂使蛋白质变性沉淀出来,离心除去蛋白质。 5.加入核酸沉淀剂,溶解CTAB,并使和核酸沉淀出来,离心得到核酸沉淀。

四、实验仪器 1.水浴锅

2.离心机(12管):3台 3.研钵:10个

4.移液枪(包括枪头):1ml、400ul

五、实验材料与药品

实验材料:新鲜菠菜叶片 1.十六烷基三甲基溴化铵(CTAB)

作用:溶解细胞膜并与核酸结合,便于分离核酸。 商品信息:瓶装/100g。

理化性质:白色或浅黄色结晶体至粉末状,有刺激气味,易溶于异丙醇,可溶于水,震荡时产生大量泡沫,化学稳定性好,耐热、耐光、耐压、耐强酸强碱。有吸湿性,在酸性溶液中稳定;溶于10份水,溶于热水、乙醇、三氯甲烷,易溶于异丙醇水溶液,微溶于丙酮,不溶于乙醚和苯。

储存:在阴凉,干燥,通风良好的地方,远离不相容的物质。 危害:高毒,对皮肤及粘膜刺激性小,有轻微脱脂作用。 2.1M Tris-HCl PH8.0缓冲液

作用:提供一个缓冲环境,防止核酸被破坏 商品信息:瓶/100ml,无色、澄清溶液

理化性质:Tris中文品名为三羟甲基氨基甲烷,瓶/500g。是一种白色结晶或粉末。溶于乙醇和水,微溶于乙酸乙酯、苯,不溶于乙醚、四氯化碳,对铜、铝有腐蚀作用,有刺激性的化学物质。

储存:室温保存。

危害:毒性低,可致癌,不要直接接触皮肤。 3.乙二胺四乙酸二钠(EDTA-2Na)

作用:螯合Mg2+或Mn2+离子,抑制脱氧核糖核酸酶(DNase)活性,活性依赖于钙离子,并能被镁离子或二价锰离子激活。

商品信息:瓶/250g。

理化性质:无味无臭或微咸的白色或乳白色结晶或颗粒状粉末。溶于水,不溶于乙醇、乙醚,其水溶液pH值约为5.3。可由EDTA与氢氧化钠和碳酸钙作用制得。

储存:于阴凉、通风的库房。远离火种、热源。应与氧化剂分开存放,切忌混储。配备相应品种和数量的消防器材。储区应备有合适的材料收容泄漏物。

危害:对粘膜和上呼吸道有刺激作用。对眼睛、皮肤有刺激作用。本品可燃,具刺激性。 4.Tris饱和酚

作用:强蛋白质变性剂。 商品信息:瓶/250ml。

理化性质:为浅黄色透明液体,上层为Tris-HCl溶液,加有抗氧化的0.25% 8-羟基喹啉和0.1%的β-巯基乙醇。

储存:4℃避光保存。

危害:Tris饱和酚有较强的腐蚀性,应尽量避免皮肤直接接触或吸入体内。如发现变为黄色或棕色,表明发生氧化,不能使用。 5.β-巯基乙醇(2-巯基乙醇)

作用:提供一种还原剂,这样酚类物质(植物材料特别是老的材料中含有大量的酚类物质)就不能被氧化成醌(醌易与DNA发生共价结合,使DNA发生褐变,从而影响你提DNA的实验)。巯基乙醇兼有消除CTAB震荡时产生的泡沫的作用。

商品信息:瓶/100g。

理化性质:无色透明液体,具有少许硫醇气味。易溶于水,乙醇和乙醚等有机溶剂,与苯可以任意比例混溶。水中溶解度:1mg/mL。

储存:对空气敏感,易吸潮。 使容器保持密闭,储存在阴凉、干燥通风处。打开了的容器必须仔细重新封口并保持竖放位臵以防止泄漏。建议贮存温度 2- 8℃。

危害:高毒吸入、摄入或经皮肤吸收后会中毒。 对环境有危害,对水体可造成污染。 本品可燃。 6.氯化钠(NaCl)

作用:CTAB-核酸复合物在高盐溶液中易溶。 商品信息:瓶/500g,分析纯AR。

理化性质:白色晶体状。易溶于水、甘油,微溶于乙醇、液氨;不溶于浓盐酸。在空气中微有潮解性。稳定性比较好。

储存:储存于阴凉、通风的库房。远离火种、热源。应与氧化剂分开存放,切忌混储。 危害: 7.无水乙醇

作用:DNA沉淀剂、洗涤剂。 商品信息:瓶/500ml,分析纯AR。

理化性质:无色澄清液体。极易从空气中吸收水分,能与水和氯仿、乙醚等多种有机溶剂以任意比例互溶。 储存:储存于阴凉、通风的库房。远离火种、热源。库温不宜超过30℃。保持容器密封。应与氧化剂、酸类、碱金属、胺类等分开存放,切忌混储。采用防爆型照明、通风设施。禁止使用易产生火花的机械设备和工具。

危害:易燃,具刺激性。蒸气与空气能形成爆炸性混合物,爆炸极限3.5%~18.0%(体积)。 8.氯仿(三氯甲烷)

作用:蛋白质变性剂,加速有机相与液相分层,去除核酸溶液中的少量酚(酚易溶于氯仿)。 商品信息:瓶/500ml。

理化性质:无色透明液体,极易挥发,有特殊气味。不溶于水,溶于醇、醚、苯。 储存:保存在密封的棕色瓶中。

危害:麻醉性。有致癌可能性。在光照下遇空气逐渐被氧化生成剧毒的光气。 9.异戊醇

作用:减少蛋白质变性操作过程中产生的气泡。异戊醇可以降低表面张力,从而减少气泡产生。另外,异戊醇有助于分相,使离心后的上层含DNA的水相、中间的变性蛋白相及下层有机溶剂相维持稳定。

商品信息:瓶/500ml。

理化性质:无色液体,有不愉快的气味。微溶于水,可混溶于醇、醚等有机溶剂。

储存:储存于阴凉、通风的库房。远离火种、热源。库温不宜超过30℃。保持容器密封。应与氧化剂、酸类等分开存放,切忌混储。采用防爆型照明、通风设施。禁止使用易产生火花的机械设备和工具。储区应备有泄漏应急处理设备和合适的收容材料。

危害:吸入、口服或经皮肤吸收有麻醉作用。其蒸气或雾对眼睛、皮肤、粘膜和呼吸道有刺激作用,可引起神经系统功能紊乱,长时间接触有麻醉作用。易燃,其蒸气与空气可形成爆炸性混合物,遇明火、高热能引起燃烧爆炸。 10.异丙醇

作用:DNA沉淀剂,DNA在异丙醇的溶解度更低,所以用异丙醇来沉淀更完全,而后由于异丙醇不易挥发,所以用乙醇洗去异丙醇,乙醇挥发快。用-20度预冷异丙醇沉淀效果较等体积乙醇沉淀好;异丙醇约和2.5倍体积的乙醇效果相当;但DNA微溶于乙醇,使用乙醇沉淀会使部分DNA溶解损失;所以多选用-20度预冷异丙醇。一般6500倍到8000倍重力10分钟就可以将异丙醇沉淀的核酸紧密的离到管底。

商品信息:棕色玻璃瓶/500ml。

理化性质:无色透明具有乙醇气味的可燃性液体。有似乙醇和丙酮混合物的气味,能与醇、醚、氯仿和水混溶,不溶于盐溶液。

储存:储存于阴凉、通风的库房。远离火种、热源。库温不宜超过30℃。保持容器密封。应与氧化剂、酸类、卤素等分开存放,切忌混储。采用防爆型照明、通风设施。禁止使用易产生火花的机械设备和工具。储区应备有泄漏应急处理设备和合适的收容材料。

危害:微毒类,高浓度蒸气具有明显麻醉作用,对眼、呼吸道的黏膜有刺激作用,能损伤视网膜及视神经。常温下可引火燃烧,其蒸汽与空气混合易形成爆炸混合物。 11.PVP-40(聚乙烯吡咯烷酮)

作用:PVP是酚的络合物,能与多酚形成一种不溶的络合物质,有效去除多酚,减少DNA中酚的污染;同时它也能和多糖结合,有效去除多糖。

商品信息:白色塑料瓶/100g。

理化性质:白色或乳白色粉末或颗粒,有微臭。溶于水、碱、酸及极性有机溶剂。 储存:室温干燥保存。 危害: 12.液氮(LN2)

作用:低温导致植物组织冻裂,方便研磨使细胞破碎,使DNA释放完全;低温情况下各酶处于低活性状态,有利于抑制DNAase的作用,保护DNA。 商品信息:分析纯

理化性质:-196℃。液态的氮气。是惰性的,无色,无臭,无腐蚀性,不可燃,温度极低。 储存:储存于阴凉、通风的库房。库温不宜超过30℃。 危害:汽化时大量吸热接触造成冻伤。

六、实验试剂

1.氯仿-异戊醇(24:1)100ml-20ml=80ml {氯仿 96ml + 异戊醇 4ml} = 100ml,4℃保存 2.酚-氯仿-异戊醇(25:24:1)40ml {氯仿-异戊醇(24:1)20ml + Tris饱和酚20ml} = 40ml,4℃保存 3.TE缓冲液 PH8.0 50ml {10mM Tris-HCl(PH8.0)缓冲液 0.5ml + 0.5M EDTA(PH8.0)0.1ml} → → 定容到50ml → 高压灭菌后冷却4℃保存  【0.5M EDTA(PH8.0)】的配制:100ml {蒸馏水 80ml + EDTA-2Na.2H2O 18.61g} → 用NaOH(约2g)调至PH8.0 → 定容至100ml → → 分装后高压灭菌备用。注:需加入NaOH调至PH8.0才能完全溶解。  【10mM Tris-HCl(PH8.0)缓冲液】的配制:10ml {1M Tris-HCl PH8.0缓冲液100μl + 水9.9ml} → 定容至10ml → 10mM Tris-HCl(PH8.0)缓冲液 4.2%CTAB抽提液 250ml

{CTAB 4g + 无水乙醇 5ml + 水100ml} → 加入200ml烧杯中 → 加热溶解 → 再依次加入 → → {5M NaCl 56ml + 1M Tris-HCl(PH8.0)20ml + 0.5M EDTA 8ml} → 定容至250ml → 高压灭菌冷却后加入 → {1%β-巯基乙醇(400ul)2ml + PVP-40 5g} → 4℃保存   【5M NaCl溶液】配制:100ml {NaCl 29.22g + 水90ml} → 加热到80℃溶解冷却后 → 定容至100ml → 高压灭菌备用 【1%(v/v)β-巯基乙醇】配制:10ml {β-巯基乙醇 100μl +水9.9ml} → 1%β-巯基乙醇10ml 5.蒸馏水

所有药剂用水都要纯净水经高压灭菌冷却

七、实验步骤

(一)实验前准备

1.研钵、异丙醇-20℃预冷;【研钵10个、异丙醇75ml】

2.将2%CTAB抽提液从4℃冰箱内取出在65℃水浴预热;【CTAB抽提液30ml】 3.称取30份新鲜菠菜叶片,每份1g,称重时去叶脉;【菠菜叶片30g】 4.用蒸馏水冲洗叶片,滤纸吸干水分,将叶片用剪刀剪小。【洗瓶、滤纸、剪刀】

5.实验器材:冰箱、65℃水浴锅、液氮、10ml离心管90个、药匙、移液枪(1ml、100μl、400μl)、离心机(10000r/min)

6.实验药剂:酚-氯仿-异戊醇30ml(每管1ml)、氯仿-异戊醇60ml(每管2ml)、无水乙醇12ml(每管400 μl)、TE缓冲液3ml(每管100μl)

(二)破碎细胞,释放溶解核酸

1.将叶片臵于预冷的研钵(实验前-20℃预冷)中,倒入液氮,尽快研磨成粉末;

 目的:低温导致植物组织冻裂,方便研磨使细胞破碎,使DNA释放完全;低温情况下各酶处于低活性状态,有利于抑制DNase的作用,保护DNA。

2.将粉末加入10ml离心管中,加入 1ml预热的CTAB 抽提缓冲液,轻轻搅动摇匀;  目的:CTAB可以溶解细胞膜并与DNA结合,便于分离DNA。加入β-巯基乙醇和PVP-40的目的是减少植物中酚类物质的影响。EDTA的作用是螯合Mg2+或Mn2+离子,抑制脱氧核糖核酸酶(DNase)活性,活性依赖于钙离子,并能被镁离子或二价锰离子激活。Tris-HCl提供一个缓冲环境,防止DNA被破坏。高盐溶液可以更好的溶解核酸-CTAB复合物。

3.将离心管臵于 65℃的水浴中保温40分钟,期间每隔10分钟轻轻摇晃几次。  目的:水浴使CTAB抽提液和叶片充分反应。

(三)抽提去掉蛋白质

1.将水浴的离心管取出,冷却 2分钟后,加入1ml酚-氯仿-异戊醇,振荡 2分钟,使两者混合均匀,12000 r/min离心10分钟;  目的:第一次离心溶液分3层,上-中-下层:CTAB-核酸-变性蛋白-有机溶剂

2.取上清液(含CTAB-核酸)至新的10 ml离心管中,加入2ml氯仿-异戊醇,轻轻颠倒离心管,混匀,12 000r/min离心10分钟。  目的:第二次离心进一步去掉变性蛋白,去掉多余的酚

(四)沉淀核酸

1.小心取上清液(含CTAB-核酸)臵于一个新的10ml离心管中(尽量避免吸取中间层),加入2.5ml的异丙醇(-20℃预冷),将离心管慢慢上下摇动30秒,使异丙醇与水层充分混合,室温放臵15分钟至能见到DNA絮状物;  目的:异丙醇为DNA沉淀剂,异丙醇与CTAB互溶,但不与核酸相溶。用-20℃预冷的异丙醇沉淀效果较等体积乙醇沉淀好,异丙醇约和2.5倍体积的乙醇效果相当,但核酸微溶于乙醇,使用乙醇沉淀会使部分核酸溶解损失;所以多选用-20度预冷异丙醇。核酸在异丙醇的溶解度更低,所以用异丙醇来沉淀更完全。异丙醇易溶于CTAB,但不与核酸相溶。 2.10000r/min离心10分钟,小心倒去上清液。  目的:第三次离心使核酸沉淀到管底。

(五)核酸的洗涤

用400ul无水乙醇洗涤核酸沉淀直至无色,10000r/min离心10分钟,倾去上清液晾干。  目的:异丙醇不易挥发,所以用乙醇洗去异丙醇及多余的NaCl,乙醇挥发快。

(六)保存

向下层离心物中加入100μl TE缓冲液进行溶解,臵于-20℃冰箱保存,以便下次课用。  目的:一般长期保存DNA,贮存在TE缓冲液中比较好。TE为含EDTA的Tris-HCl(PH 8.0)缓冲液:其中比较关键的成分是EDTA,日常环境中不可避免的存在DNase,而DNase的活性依赖于钙离子,并能被镁离子或二价锰离子激活。镁离子存在条件下,DNase I可随机剪切双链DNA的任意位点;二价锰离子存在条件下,DNase I可在同一位点剪切DNA双链,形成平末端,或1-2个核苷酸突出的粘末端。TE中含有的EDTA可以螯合金属离子,从而使DNase失活。而Tris-HCl的作用主要是维持一定碱性PH值,有助于DNA的溶解和稳定。不加EDTA也是可以的,而且EDTA会影响下游酶切,连接反应以及质粒转染进细胞的效率,如果接下来要做这些实验是应该避免使用含EDTA的缓冲液的。短期储存DNA也可以使用ddH2O,有助于DNA连接等效果。

八、实验注意事项

1.在整个实验过程中应严格执行无菌操作; 2.部分药品有毒,操作中应注意安全防护;

3.磨样时最好是加液氮,磨样速度要快,使材料处于低温状态; 4.刚投入水浴时可以稍快速的晃动,之后的晃动一定要轻柔; 5.抽提时不要有太力振动,操作也要仔细,尽量避免DNA断裂;

6.将异丙醇吸出时用的枪头一定要剪过的,这点很重要,过尖的枪头会把DNA链弄断。

九、思考题

1.本实验中用到的各种试剂的作用是什么? 2.本实验中进行了几次离心操作,每次的目的?

十、实验安排

全班55人,按照学号分组,每6人一组,共9组,最后一组7人。 每组作3个离心管,共用一个研钵。

每3组(共18人9个离心管)共同进行离心操作。

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