标本采集相关注意事项
一、静脉血标本的采集：
静脉采血时病人方面应注意的问题
1、避免剧烈运动，一般主张抽血前24h内不做剧烈运动，清晨采血，住院病人可在起床前采血，回家住的病人应至少休息15分钟后采血。
2、注意合理饮食。除了急诊或其它特殊原因外，一般主张在禁食水12h后空腹采血。
3、药物的影响。很多的药物进入人体后可影响某些化验项目的结果，病人在化验前应尽可能停服对实验有干扰的药物。 静脉采血时护士应注意的问题
4、采血的顺序：采血顺序为：血培养→生化、免疫项目→凝血→血流变、微量元素→ 血沉/血常规→氟化钠血糖
5、采血时止血带使用应少于1分钟，以免引起血液淤滞，造成血管内溶血或血液某些成分改变。
6、当一侧手臂输液时应从对侧手臂采血，以免影响血糖、血钾等的浓度。
7、血标本应防止溶血，影响溶血的因素有：用止血带时间过长；抗凝管使用不当或抗凝混合时过度振荡；容器污染；血液中泡沫注入试管；标本放置时间长或突然冷却和受热等等。
8、静脉采血后混匀次数说明：血培养瓶混匀8-10次，含分离胶（黄帽）的采血管混匀5次；凝血管（蓝帽）混匀3-4次，含肝素（绿帽）和血常规（紫帽）抗凝采血管混匀8-10次；血糖（灰帽）氟化钠抗凝采血管混匀8-10次；混匀方式如下图（图为混匀1次）。*注意要轻柔混匀，不要剧烈震荡，以防细胞破裂影响检验结果。
二、血培养标本的采集
血培养标本的采集指征及最佳时机
病人出现以下临床表现，或同时具备以下几种临床表现时应采集血培养： 1.发热（大于等于38℃）或低温（小于等于36℃） 2.寒战
3.白细胞增多（大于10X109/L，特别有“核左移”时） 4.粒细胞减少（成熟的多形核白细胞小于1X109/L) 5.血小板减少 6.皮肤、黏膜出血 7.昏迷
8.多器官衰竭 9.血压降低 10.呼吸加快
寒战高热前1h左右菌量最多，建议在寒战高热时采血培养
在寒战或高热高峰到来之前尽快（10分钟内）从不同部位采集两套血培养。 如果从导管或输液港采集导管血，不需要使用盐水冲洗管道内残留的抗凝剂，其抗菌作用可被培养基充分稀释。 应至少做2套血培养，其中至少有1套外周血，同时应尽快无菌操作从导管或VAP采集另一套血培养。
选定采血点后，先对培养瓶进行消毒，弃去培养瓶金属盖 75%酒精消毒血培养瓶橡皮塞,待干60秒。 采血前质量保证：皮肤消毒 三步法：
范围：直径>5cm 1.75%酒精擦拭静脉穿刺点 >30秒；
2.1%2%碘酊30秒或10%碘伏消毒60秒，从穿刺点由内向外环形消毒；
3.75%酒精脱碘。
擦酒精 涂碘伏 酒精脱碘 血标本采集质量保证：采血量
1.每位患者采集2~3套血培养（40~60ml）在不同部位穿刺.2.1套（20ml）：一个穿刺点，通常为1个需氧+1个厌氧(各10ml)，提高阳性率。 3.如果采血量不足，应优先将血液注入需氧瓶，剩余血液注入厌氧瓶。因为大部分需氧菌、兼性厌氧菌、酵母菌可以在需氧瓶中生长。
4.用注射器（采血注射器不能含有抗凝剂）无菌穿刺取血后，勿换针头，排除针头的空气和少量血液后，直接注入血培养瓶； 注入的顺序：先厌氧血培养瓶→再需氧血培养瓶，避免发生最后将余血注入厌氧瓶时同时将空气注入的情况。 5.如用蝶形针采血，完成采血后 注入的顺序：先需氧血培养瓶→再厌氧血培养瓶。注完后应先拔出与厌氧瓶连接的针，再拔出刺入患者血管的针，以避免气体进入瓶中。 血培养标本的送检
室温：立即送检； 不可冷藏或冷冻；
2小时内上机；延迟上机可能导致假阴性。 血培养标本应按要求尽快送往实验室，不得超过2小时。如无法及时送检，血培养标本需室温（20-25℃）保存。
三、痰标本的采集 采集方法 1.自然咳痰法
以晨痰为佳。用清水反复漱口，深呼吸几次后用力咳出呼吸道深部的痰，痰液直接吐入无菌容器中，尽快送检。否则有的细菌（如肺炎链球菌、流感嗜血杆菌）在外界可能死亡。不能及时送检的标本，室温保存≤2h。要求采到肺深部的痰液，不要唾液。无痰或痰量极少者可用3～5%氯化钠溶液5ml雾化吸入约5min后留取痰液。
如有可能，应在医护人员直视下留取清晨第二口痰。嘱咐患者留取前摘去牙托，清洁口腔，如刷牙后反复用生理盐水漱口；深吸气后用力自气管深部咳出痰液，置无菌容器内。应尽可能防止唾液及鼻咽部分泌物混入样品，不应用纸巾包裹痰液。在抗生素应用前采集痰标本;咳痰标本应用最早且广泛，但也是最受争议的标本；取标本前应摘去牙托，清洁口腔如刷牙和漱口;深咳，采集标本过程中最好要有专业的医务人员指导。 2.经人工气道吸痰标本采集 注意事项
1.痰标本不能及时送检者，可暂存4℃冰箱。室温下耽搁数小时，定植于口咽部的非致病菌过度生长而肺炎链球菌、葡萄球菌和流感嗜血杆菌检出率则明显降低。
2.在临床上咳痰仍是诊断肺部感染最常用的标本，但咳痰也最易被口咽部正常菌群污染。痰液标本的细菌学检验，必须区分是病原菌还是来自上呼吸道的正常菌群。经过洗涤处理的痰液或自气管镜采集及气管穿刺所获标本，结果比较可靠。 3.由于口腔和咽部存在大量的革兰阳性和革兰阴性厌氧细菌，而且缺乏可靠的方法区分它们究竟是致病菌还是定植菌，因此不主张对咳痰标本进行厌氧菌培养。 4.约有1/4～1/2肺部感染患者可能发生菌血症，应同时做血培养。
5.无论是何种方式留取痰标本，都应该尽可能避免污染菌、口咽部定植菌的污染。
四、尿标本的采集
尿培养采集时常出现的问题
1.收集的尿液不新鲜，放置时间超过1小时，细菌大增，出现假阳性。 2.膀胱内尿液停留时间短（不到6小时），或饮水太多，稀释了尿中细菌。 3.中段尿收集不合标准，外阴消毒对尿培养影响很大，消毒液过多而混入尿标本抑制了细菌生长，出现假阴性结果。
4.尿培养前曾使用抗菌药物，可出现假阴性。 女性患者清洁中段尿采集方法：
清洁和采集标本时保持两腿分开（男性：翻转包皮并清洁龟头（阴茎头部）余同女性。） 清洗：在采集标本前充分清洗。使清洁剂，尽可能认真地擦拭生殖器区域，从前向后擦拭皮肤折叠处。
冲洗：在使用肥皂片清洗后，用水湿润纱布片同向从前向后冲洗。每个纱布片只使用一次即丟弃。 用手指拿着采样杯外侧，不要接触杯口边缘。首先，将少量尿液排入厕所，然后用样品杯采集半杯尿液，盖紧样本杯盖子。 留置尿管尿培养标本采集方法
对长期留置尿管的患者进行常规尿培养，可能除流行病学意义没有其它价值。这些患者通常会培养出大量潜在病原菌。
可选择的尿标本是从留置尿管的采样口采集的标本。使用无针的尿液采集端可增强操作安全性 操作：
将导管夹闭，在管中采集尿标本，但夹闭时间不能超过30 min； 使用酒精棉签消毒采样口（如果没有采集口，消毒采样导管部位）； 将针头插入采样管，将尿液吸入注射器； 将尿液转入无菌容器；
在申请单上注明标本采集自留置导尿管。 送检
尿标本在室温中会使病原菌和污染菌同时生长。
所有的尿培养标本采集后必须在30min内送检进行培养。
若采集后不能在30min内送检进行培养则必须冷藏。冷藏的尿标本应当在24h进行送检培养。
五、各种标本送检的时间要求
标本送检的时间要求
1.血常规检测标本采集后应立即送检，不能立即送检的样本也不应超过2小时，因细胞形态学检查必须在4小时内将涂片制成，样本保存室温即可。
2．粪便标本采集后应立即送检，不能立即送检的标本应在室温保存，但需在4h内完成检验。
3．脑脊液采集后应正确盖好，防止泄漏或容器外部留有残留物。常温立即送检，实验室收到标本后应立即检验。脑脊液标本送检的理想时间为15min内，半小时送检是可接受的，如果送检时间超过1h，则会影响结果，须与临床沟通，并说明由于标本延时结果可能受到影响。在结果报告时，在备注处注明此情况。 4.浆膜腔积液（胸腹水）：常规检验标本采集后应立即送检，不能立即送检的标本应室温保存，但需在2h内完成检验。
5.凝血功能检测标本采集后应立即送检，不能立即送检的标本应以3000r/min离心10分钟，在2小时内分离血浆，需在4小时内测定.6.尿标本运送：必须保证标本运送过程中的安全，防止溢出。溢出后应立刻对环境进行消毒处理。在标本采集后2小时内完成检验。
7．动脉血气：保证标本运送的及时性，标本采集后应立即送检。如不能及时送检，应放入冰箱中2-8℃保存。必须保证标本运送过程中的安全性，防止过度震荡、防止标本容器的破损、防止标本被污染、防止标本及唯一性标识的丢失和混淆、防止标本对环境的污染、水分蒸发等。如有标本溢出，溢出后应立即对环境进行消毒处理，尤其小心针头的暴露。 8.血培养标本：采集后应正确盖好，防止泄漏或容器外部留有残留物。常温立即送检，实验室收到标本后应立即放入血培养仪中进行培养。如果实验室收到采血量不足的血培养标本不必拒收，仍需进行培养，但需在报告单上注明“送检血液标本量未达到要求，会影响结果的灵敏度”。
9用于生化检验的标本采集后应立即送检，不能马上送检的可暂置4℃冰箱保存，但应在4h内检测。
10免疫血标本标本采集后应立即送检，或及时分离血清暂放4℃短时保存；穿刺液标本的微生物检查送检要求
11.一般胸腹水标本采集后，常温15分钟内送至检验科，若不能及时送检，室温保存不超过2小时。若做真菌培养需4℃保存。
